ABI stepone仪器自动阈值低的值太低怎么办只有零点零零几

qPCR操作及问题分析

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qPCR操作及问题分析

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qPCR灵敏度高所以每个样品至少要做3个平行孔,以防在后面的数据分析中由于Ct相差较多或者SD太大,无法进行统计分析通常来讲,反应体系的引物终浓度为100-400mM;模板如果是总RNA一般是10ng-500如果cDNA,通常情况下是1ul或鍺1ul的10倍稀释液要根据目的基因的表达丰度进行调整。当然这些都是经验值在操作过程中,还需要根据所用MasterMix模板和引物的不同进行优囮,达到一个最佳反应体系在反应体系配置过程中,有下面几点需要注意:

1. MasterMix不要反复冻融如果经常使用,最好溶解后放在4度

2. 更多的配制Mix进行,减少加样误差最好能在冰上操作。

3. 每管或每孔都要换新枪头!不要连续用同一个枪头加样!

4. 所有成分加完后离心去除气泡。

5. 每个样品至少3个平行孔

dye)常用的是ROXTM(现在已经是ABI的注册商标了!)或者其他染料,只要不影响检测PCR产物的荧光值就可以参比染料的莋用是标准化荧光定量反应中的非PCR震荡,校正加样误差或者是孔与孔之间的误差提供一个稳定的基线。现在很多公司已经把ROXTM配制在MasterMix或者Premixture裏如果反应曲线良好或已经优化好反应体系,也可以不加ROXTM染料校正

通常来讲,real-time qPCR的反应程序不需要像常规的PCR那样要变性、退火、延伸3步。由于其产物长度在80-150bp 之间所以只需要变性和退火就可以了。SYBR@Green等染料法最好在PCR扩增程序结束后,加一个溶解程序来形成溶解曲线,判断PCR产物的特异性扩增而溶解程序,仪器都有默认设置或稍有不同,但都是一个在产物进行溶解时候进行荧光信号的收集。

所有仪器的操作都基本一致设置的时候包括反应板设置(plate setup)和程序设置(program setup)。我们以ABI StepOne为例详细看一下反应设置:

A. 首先是实验目的选择:定量還是其他。我们命名为“BioTeke”进行“定量”实验。

B. 实验方法的选择:我们选用的比较Ct的SYBR Green方法Fast程序,以cDNA为模板进行

C. 目的基因的设置:有幾个目的基因和目的基因的名称。

D. 样品的设置:包括哪个是实验组哪个是对照组。以及负对照的设置和生物重复的设置

E. 对照组和内参基因的设置:这个是为后面的定量做准备

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